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Hier im mikrobiologischen Labor der DWS haben wir uns auf die Durchführung von Tests der minimalen Hemmkonzentration (MIC) und der minimalen bakteriziden Konzentration (MBC) gegen anspruchsvolle anaerobe Bakterien spezialisiert, einschließlich Kommensalen des Darmmikrobioms, von denen einige spezifische Wachstumsanforderungen haben. Wir halten uns an die CLSI-Richtlinien für Empfindlichkeitstests von anaeroben Bakterien [1,2,3] und verwenden eine standardisierte Agarverdünnungs-MIC-Methode sowie das für die zu testenden Organismen geeignete Medium. Wenn wir eine MHK-Studie mit Anaerobiern durchführen, wird der gesamte Prozess in einer sauerstofffreien Umgebung in einer Whitley A95 TG Workstation durchgeführt. Wir verfügen auch über eine umfangreiche Kultursammlung von Anaerobiern, die aus menschlichen Fäkalproben isoliert wurden, darunter Bacteroides-, Clostridium-, Eggertella- und Fusobacterium-Arten, die wir unseren Kunden zur Verfügung stellen können, wenn sie die Wirksamkeit antimikrobieller Mittel in ihrem Auftrag untersuchen.
MHK-Tests liefern wertvolle Erkenntnisse über die Empfindlichkeit und die sich abzeichnende Resistenz von Krankheitserregern gegenüber antimikrobiellen Mitteln. Eine kontinuierliche Überwachung der Resistenz ist für klinische Behandlungsentscheidungen und die Optimierung der Medikamentendosierung von entscheidender Bedeutung, und in den letzten Jahren hat das Interesse an Resistenzraten bei anaeroben Bakterien zugenommen. Weltweit hat sich in den letzten 20 Jahren ein Trend zur Resistenz gegen β-Laktam-Antibiotika, sowohl allein als auch in Kombination mit β-Laktamasen und Carbapenemen, bei den Gattungen Bacteroides und Parabacteroides abgezeichnet [4]. In ganz Europa wurde ein Anstieg der Resistenz gegen Amoxicillin: Clavulanat, Cefoxitin und Imipenem von 0,3-3 % auf 10 % bei den Bacteroides fragilis-Gruppen festgestellt. Studien in Kanada haben eine erhöhte Prävalenz der Resistenz gegen Amoxicillin: Clavulanat von 0,8 % im Jahr 1992 auf 6,2 % im Jahr 2011 innerhalb von B. fragilis-Gruppen festgestellt [4]. Aus den USA wurde eine Zunahme der Resistenz von Bacteroides spp. und Parabacteroides spp. gegen Ampicillin: Sulbactam (von 4 % auf 6 %) und Piperacillin: Tazobactam (von 2 % auf 7 %) zwischen 2007-2009 und 2010-2012 gemeldet [4].
Kürzlich isolierten Hashimoto et al. (2023) 86 B. fragilis und 58 nicht-fragilis Bacteroides-Stämme aus klinischen Proben vom Menschen, die zwischen 2011 und 2021 in Japan gesammelt wurden, und untersuchten die Empfindlichkeit gegenüber Piperacillin, Cefotaxim, Cefepim, Meropenem, Clindamycin und Minocyclin sowie die Prävalenz der Resistenzgene cepA, cfiA, cfxA, ermF, nim und tetQ in Bacteroides spp. [5]. Die Resistenzraten gegen Penicilline und Cephalosporine bei Bacteroides spp., die nicht fragilis sind, waren deutlich höher als die Raten bei B. fragilis-Isolaten. Bei B. fragilis-Isolaten mit dem cfxA-Gen waren die Resistenzraten von Piperacillin, Cefotaxim und Cefepim deutlich höher als bei denen ohne das Gen, und einige B. fragilis-Isolate mit dem cfiA-Gen wiesen eine Resistenz gegen Meropenem auf. Anaerobier auf Brucella-Blutagar-MIC-Platte
Geschrieben von DWS-Mikrobiologin Charlotte Austin
Referenzen
CLSI-Dokument M07: Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacteria that grow Aerobically - 11th Edition (2018).
CLSI-Dokument M100: Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing - 33rd Edition (2023).
CLSI-Dokument M11: Methods for antimicrobial susceptibility testing of anaerobic bacteria - 9th Edition (2018).
Reissier S, Penven M, Guérin F, Cattoir V (2023). Recent Trends in Antimicrobial Resistance among Anaerobic Clinical Isolates. Microorganisms, 11(6), 1474. MDPI AG
Hashimoto T, Hashinaga K, Komiya K, Hiramatsu K, (2023) Prevalence of antimicrobial resistant genes in Bacteroides spp. isolated in Oita Prefecture, Japan. Journal of Infection and Chemotherapy Band 29 Ausgabe 3, 284-288
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